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產(chǎn)品簡(jiǎn)介:
辛基-瓊脂糖凝膠4FF是將辛基鍵合在瓊脂糖凝膠上形成的一種可利用疏水作用來(lái)實(shí)現(xiàn)目標(biāo)產(chǎn)品純化分離的中等疏水類介質(zhì)。適合各種蛋白的分離和純化。具有流速快,使用方便,應(yīng)用廣泛的特點(diǎn)。
產(chǎn)品參數(shù):
產(chǎn)品名稱:辛基-瓊脂糖凝膠4FF(Octyl-Sepharose4FF)
基質(zhì):6%交聯(lián)瓊脂糖凝膠
配基:正丁烷基n-Octyl
配基密度:5μmol/mL
顆粒大小:45-165μm
最大流速:600cm/h
工作pH:3-13
操作溫度:室溫
使用說(shuō)明:辛基-瓊脂糖凝膠4FF是一種中等疏水層析介質(zhì),適合各種蛋白的分離和純化。
使用方法:
1.裝柱:
(1)將所有的試劑和填料達(dá)到室溫.配制初始緩沖液(平衡液)和緩沖液。
(2)根據(jù)柱子大小取所需凝膠的量,清洗掉20%乙醇,抽干,用初始緩沖液(按凝膠:緩沖液=3:1比例)配成勻漿。
(3)將柱內(nèi)及柱子底端用水或緩沖液潤(rùn)濕并保持一小段液體(液面略高于濾膜),務(wù)必使底端無(wú)氣泡。
(4)用玻璃棒引導(dǎo)勻漿沿著柱內(nèi)壁一次性倒入柱內(nèi),注意不要使用氣泡。打開(kāi)柱子出液口,使凝膠在柱內(nèi)自由沉降,連結(jié)好柱子頂端柱頭。
(5)打開(kāi)蠕動(dòng)泵,讓緩沖液用使用時(shí)流速的1.33倍的流速流過(guò),使柱床穩(wěn)定。用2-3倍柱體積的緩沖液平衡柱子。
2.平衡:
讓平衡緩沖液以一定流速流過(guò)柱子,到流出液電導(dǎo)和pH不變。平衡緩沖液一般是高鹽濃度的緩沖液,如:0.02-0.05mol/L的PBS加1-2.5mol/L(NH4)2SO4等。
3.上樣:
(1)樣品用平衡液配制,渾濁的樣品要離心、過(guò)濾后上柱;
(2)一般情況是讓目標(biāo)產(chǎn)品結(jié)合在柱子上,用平衡洗液洗去雜質(zhì),再選擇一種洗脫液洗下目標(biāo)產(chǎn)品。
(3)介質(zhì)對(duì)樣品組分吸附的程度取決于樣品的疏水性質(zhì)、流動(dòng)相的離子強(qiáng)度和溫度。溫度越大、鹽濃度越高或樣品組分疏水性越強(qiáng),介質(zhì)對(duì)組分吸附越牢。
4.洗脫:
疏水介質(zhì)可用減小鹽濃度進(jìn)行洗脫。加表面活性劑或者有機(jī)溶劑可加強(qiáng)洗脫。最常用的洗脫液是低鹽濃度緩沖液,如:0.02-0.05mol/L的PBS。
5.再生:
一般用低鹽濃度的緩沖液洗,洗10倍以上柱體積,接著用結(jié)合蛋白的平衡液洗到平衡,可再次使用。若有失活的蛋白或者脂類物質(zhì)在再生時(shí)洗不掉,可用在位清洗(CIP)除去。
6.在位清洗:
(1)對(duì)于以離子鍵結(jié)合上去的蛋白,可以用2MNaCl去除。
(2)對(duì)沉淀蛋白、以疏水作用結(jié)合的蛋白或者脂類物質(zhì),可用1MNaOH去除。
(3)對(duì)強(qiáng)疏水性結(jié)合的蛋白、脂類等,可用4-10倍柱體積的70%乙醇或30%異丙醇清洗,但要注意有機(jī)溶劑的濃度以梯度的方式逐漸增加,否則容易產(chǎn)生氣泡。
(4)清洗完畢后,用至少3倍柱體積緩沖液平衡柱子。
7.去熱源:
用0.5M的氫氧化鈉清洗柱子5-6小時(shí)或者用0.1M的氫氧化鈉24小時(shí)?;蛴靡韵虏襟E去除:
(1)2倍柱體積的70%的乙醇;
(2)2倍柱體積50MmTris-HcLPh7.5
(3)1倍柱體積4M尿素
(4)3倍柱體積的Tris緩沖液+0.1MNaCl;
以上緩沖液都在無(wú)熱源的雙蒸水中配制。
8.消毒:
用0.5-1.0MNaOH室溫下洗8-10倍柱體積,初始緩沖液平衡柱子。
注意事項(xiàng):
(1)密封貯存于4°C-28°C(保存溶液為20%乙醇+0.1M醋酸鈉),通風(fēng)、干燥的地方,不能冷凍。用過(guò)的柱子貯存于4°C(20%乙醇)。
(2)在裝柱、使用和保存柱子的時(shí)候,要避免柱子流干,氣泡進(jìn)入。